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13种蛋白提取方法大全
更新时间:2025-04-11      阅读:110

一、物理破碎法

1. 超声波破碎法
利用超声波的空化效应和机械振动破坏细胞膜,释放蛋白质。适用于细菌、培养细胞等,需控制功率和时间以防止蛋白质变性。

2. 液氮研磨法
通过液氮冷冻组织后研磨成粉末,结合裂解液释放蛋白质,常用于植物或动物组织(如脑、脊髓)。

3. 高压破碎法
通过高压迫使细胞破裂,适用于微生物和大规模提取。

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二、化学溶解法 

1. 洗涤剂裂解法
使用SDSTriton X-100等去污剂溶解细胞膜,适用于细胞和组织的快速裂解。

2. 尿素/硫脲变性法
高浓度尿素(8-9 M)破坏蛋白质非共价键,结合CHAPS去污剂提取疏水性蛋白,常用于双向电泳样本制备。

3. 三氯醋酸-丙酮沉淀法
通过TCA和丙酮沉淀蛋白质,去除脂类及小分子杂质,适用于植物和富脂样本。

三、盐析与沉淀法

1. 硫酸铵盐析法
通过调节盐浓度使蛋白质沉淀,操作简单且成本低,适合初步纯化。

2. 有机溶剂沉淀法
使用乙醇、丙酮等降低蛋白质溶解度,常用于去除杂蛋白或浓缩样本。

四、层析与过滤法

1. 亲和层析法
利用目标蛋白与配体(如Ni-NTA树脂、抗体)的特异性结合进行纯化,选择性高但成本较高216

2. 凝胶过滤法
基于分子量差异分离蛋白质,适用于去除小分子杂质或分离不同大小的蛋白复合物。

 五、特殊场景提取法

1. 线粒体蛋白提取
通过差速离心分离线粒体,结合裂解液(含甘露醇、EDTA)提取膜蛋白,适用于亚细胞结构研究。

2. 细菌蛋白提取
使用溶菌酶或SDS裂解细菌细胞壁,结合离心去除碎片,常用于重组蛋白表达分析。

3. 双向电泳前处理法
针对双向电泳优化,采用尿素/硫脲裂解液和还原剂(DTT)保持蛋白质溶解性,减少电荷异质性。

六、实验优化建议

样本类型:植物组织需液氮研磨和TCA沉淀;动物组织推荐冻融循环或匀浆法。

抑制剂使用:裂解液中需添加蛋白酶抑制剂(如PMSF、亮肽素)和还原剂(DTT)防止降解。

温度控制:全程冰上操作,避免蛋白质变性或酶活性损失。

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